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基于荧光共振能量转移快速检测食品中的四环素(3)

来源:无损检测 【在线投稿】 栏目:期刊导读 时间:2021-06-25
作者:网站采编
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摘要:图4 氨基化的NaYF4:Yb,Er UCNPs合成表征Fig.4 The synthesis characterization image of aminofunctionalized NaYF4:Yb,Er UCNPs 作为 FRET 供体和受体,NaYF4:Yb,Er UCNPs和GNPs的形

图4 氨基化的NaYF4:Yb,Er UCNPs合成表征Fig.4 The synthesis characterization image of aminofunctionalized NaYF4:Yb,Er UCNPs

作为 FRET 供体和受体,NaYF4:Yb,Er UCNPs和GNPs的形状和大小非常重要。如图1所示,NaYF4:Yb,ErUCNPs的SEM图像显示其分布均匀,直径为60nm~80 nm,符合生物标志物的要求。同时,NaYF4:Yb,Er UCNPs在表面没有亲水性官能团,不具备生物学特性[39],因此需要对其进行表面修饰。修饰后的NaYF4:Yb,Er UCNPs用X射线衍射(XDR)对其进行表征,如图3所示,氨基化 NaYF4:Yb,Er UCNPs与标准卡片 JCPDS 和JCPDS 一致,且没有明显的杂质峰,同时氨基化修饰后与修饰前相比,上转换纳米材料的结构没有受到影响,修饰后的荧光强度增强。图4给出了UCNPs的表面修饰的红外光谱图(Fourier transform infrared spectroscopy,FT-IR),从 FT-IR 图中可看出,修饰前,在 3 417、2 928、2 873 cm-1处出现了强度不一的吸收峰,其中在3 417 cm-1观察到羟基的伸缩振动特征峰;2 928、2 873cm-1等处出现了属于亚甲基的不对称和对称伸缩振动特征峰。氨基修饰后,出现了一个位于1084cm-1处新的吸收峰,同时伴随2 928、2 873cm-1处的吸收峰消失,这归结于二氧化硅键的对称伸缩振动,说明上转换纳米材料已成功被二氧化硅包覆。而在3 251、1 612 cm-1处均出现了由氨基引起的振动峰,这也证明了所制备的NaYF4:Yb,Er UCNPs氨基化修饰成功。

从图2中可看出,通过柠檬酸钠合成法制备的GNPs,形状近似为球形,尺寸相对均匀,为10 nm。同时,利用柠檬酸钠作为还原剂制备出的GNPs能够很好的分散在水中,形成稳定的胶体溶液[23]。

2.2 NaYF4:Yb,Er UCNPs 连接 TCs Ab 和 GNPs 连接TCs Ag-BSA的表征

图 5为 976 nm 激发光下 NaYF4:Yb,Er UCNPs的荧光光谱图,图6为GNPs偶联TCs Ag-BSA前后的紫外可见吸收光谱图和TCs Ab-UCNPs的荧光发射光谱图。

图5 976 nm激发光下NaYF4:Yb,Er UCNPs的荧光光谱Fig.5 Fluorescence spectra of NaYF4:Yb,Er UCNPs in the 976 nm excitation

如图5所示,在 976 nm激发光下 NaYF4:Yb,Er UCNPs可以得到3组荧光特征发射峰:525、542 nm和660 nm,其中541 nm处的荧光强度最强,呈现出明显的绿色荧光,故将其作为响应光谱,后续平台的构建主要看此处的荧光强度变化。此外,通过对UCNPs和TCs-Ab偶联前后的荧光图进行对比,发现偶联后的波长和形状与偶联前相一致,发射峰的位置没有改变,但位于541 nm处荧光强度有所减弱,说明UCNPs已经成功连接上抗体。

GNPs易于与生物分子结合,本研究证实了TCs Ag-BSA-GNPs的成功修饰。从图6可看出,GNPs的紫外可见吸收光谱521 nm(GNPs)红移到了524 nm(TCs Ag-BSA-GNPs)处,这种红移现象说明GNPs已成功偶联上了TCs Ag-BSA,在红移的过程中没有明显的峰展宽,说明GNPs不仅没有聚集现象而且具有良好的分散性[35],同时,偶联TCs Ag-BSA后的GNPs所产生的红外吸收光谱红移后有利于提高FRET体系的灵敏度[40]。还可以看出,当UCNPs和GNPs结合后,能够发生能量共振转移,使得GNPs的吸收光谱和UCNPs的荧光发射光谱具有重叠的光谱,从而导致荧光淬灭。

图6 GNPs、TCs Ag-BSA-GNPs的紫外可见吸收光谱和TCs Ab-UCNPs的荧光发射光谱Fig.6 UV-vis absorption spectrum of GNPs,TCs Ag-BSA-GNPs and UC fluorescence emission spectrum of TCs Ab-UCNPs

2.3 基于FRET体系检测TCs的结果

在FRET体系中,固定供体和受体的浓度,改变游离TCs Ag-BSA的浓度,976 nm的红外光激发下检测溶液中荧光强度变化,如图7所示。图8为不同浓度的TCs Ag-BSA在不同体系下的荧光强度关系,图9为不同含量的TCs抗原和荧光恢复量(I-I0)的线性关系。

图7 不同浓度的TCs抗原在FRET体系中的荧光光谱Fig.7 The UC fluorescence spectra image of the FRET system at different concentrations of TCs Ag-BSA

图8 不同浓度的TCs抗原在不同体系下的荧光光谱图Fig.8 The fluorescence spectra between the different concentration of TCs Ag-BSA and the fluorescent intensity in different system

随着抗原浓度的增加,UCNPs和GNPs之间的距离缩短,能量从供体不断转移至受体,使得UCNPs的荧光强度逐渐增加。图8中I-I0代表荧光淬灭-恢复量(I:加入不同浓度TCs Ag-BSA后的UCNPs-GNPs体系荧光;I0:没有加TCs Ag-BSA的UCNPs-GNPs体系荧光),随着TCs Ag-BSA浓度的增加,体系中的荧光恢复量逐渐增加,直到250 ng/mL荧光强度开始趋于平稳。在0.1 ng/mL~250 ng/mL范围内,荧光强度逐渐增加,在30 ng/mL~100 ng/mL范围内,抗原浓度与UCNPs的荧光强度呈现出了良好的线性关系,相关系数为0.995 67(如图9所示)。当TCs Ag-BSA的浓度超过250 ng/mL,FRET体系的荧光强度趋向于平稳,最低的检测限为0.1 ng/mL,UCNPs和GNPs所产生的荧光淬灭量基本得到恢复。

文章来源:《无损检测》 网址: http://www.wsjczzs.cn/qikandaodu/2021/0625/568.html



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